Abstract
Duloksetyna jest selektywnym inhibitorem wychwytu zwrotnego serotoniny i noradrenaliny drugiej generacji stosowanym głównie w leczeniu depresji. W związku z jej stosowaniem odnotowano stosunkowo niewiele przypadków śmiertelnych. Podobnie, nie ma znanych doniesień, które przedstawiałyby kompleksową analizę próbek krwi, płynów i tkanek w sytuacji przedawkowania. W niniejszym opracowaniu przedstawiamy śmiertelny przypadek toksycznego działania duloksetyny z najwyższym zgłoszonym pośmiertnym stężeniem we krwi oraz kompleksową analizą toksykologiczną duloksetyny we krwi udowej, płynie szklistym, tkance wątroby, moczu i treści żołądkowej. W ten sposób mamy nadzieję dostarczyć danych, które mogą pomóc zarówno toksykologom, jak i patologom sądowym w ocenie toksyczności duloksetyny w przyszłości.
Wprowadzenie
Duloksetyna (Cymbalta®) jest silnym i selektywnym inhibitorem wychwytu zwrotnego serotoniny i noradrenaliny (SNRI), dostępnym w postaci kapsułek o opóźnionym uwalnianiu. Jego nazwa chemiczna to (+)-(S)-N-metylo-γ-(1-naftyloksy)-2-tiofenpropyloaminy chlorowodorek (1) (rysunek 1). Wzór empiryczny to C18H19NOS-HCl, co odpowiada masie cząsteczkowej 333,88 g/mol (2).
Struktura duloksetyny.
Struktura duloksetyny.
Jest ona dopuszczona do obrotu w leczeniu wielu schorzeń ośrodkowego układu nerwowego (OUN), w tym jako lek przeciwbólowy w obwodowej neuropatii cukrzycowej, fibromialgii i przewlekłym bólu mięśniowo-szkieletowym. Ten lek drugiej generacji jest również stosowany w leczeniu dużych zaburzeń depresyjnych, uogólnionych zaburzeń lękowych i wysiłkowego nietrzymania moczu u kobiet (1). Ten rozszerzający się zakres stosowania wraz z kilkoma znanymi interakcjami między lekami wydawanymi na receptę może prowadzić do nowych problemów w toksykologii pośmiertnej. Duloksetyna była związana z toksycznym działaniem na serotoninę w połączeniu z niektórymi lekami, ale nadal istnieje niewiele znanych przypadków toksyczności spowodowanej wyłącznie przedawkowaniem duloksetyny (3). Podobnie jak inne SNRI drugiej generacji, duloksetyna ma mniej działań niepożądanych niż trójpierścieniowe leki przeciwdepresyjne (TCA) i jest mniej prawdopodobne, aby doprowadzić do śmierci po przedawkowaniu (3). Objawy przedawkowania duloksetyny mogą obejmować senność, śpiączkę, zespół serotoninowy, drgawki, omdlenia, tachykardię, niedociśnienie, nadciśnienie tętnicze i wymioty (2).
Chlorowodorek duloksetyny jest przepisywany w dawkach dobowych 60-120 mg, przy czym dawki stosowane w leczeniu lęku i (lub) depresji wynoszą zazwyczaj od 40 do 60 mg, albo raz na dobę, albo w dwóch dawkach podzielonych. Maksymalne stężenie w osoczu występuje po 6 godzinach, a stan stacjonarny jest osiągany w ciągu 3 dni. Duloksetyna jest w wysokim stopniu związana (>90%) z białkami w ludzkim osoczu, a pozorna objętość dystrybucji wynosi średnio ∼1,640 L (1). Metabolizm zachodzi głównie w wątrobie z biotransformacją z udziałem układu cytochromu P450 w 80-90% przez izoenzymy CYP1A2 i CYP2D6 do licznych nieaktywnych metabolitów (4). Kinetyka wykazuje liniowy przebieg w zakresie zalecanych dawek, po przekroczeniu których widoczne jest nasycenie z nieliniową szybkością kinetyczną. Średni okres półtrwania eliminacji (t1/2) wynosi około 12 h, wahając się od 8 do 17 h w badaniach klinicznych (4).
Amerykańskie Stowarzyszenie Centrów Kontroli Zatruć (AAPCC) zgłosiło w 2013 roku 3 428 przypadków zatruć z udziałem duloksetyny (5). Ponadto donoszą, że liczba śmiertelnych przypadków związanych z duloksetyną wzrosła z 1 przypadku w 2004 roku do 14 w 2007 roku (4). Pomimo tego faktu w literaturze opisano stosunkowo niewiele przypadków śmiertelnej toksyczności duloksetyny. W raporcie z Australii w latach 2009-2012 odnotowano 19 przypadków śmiertelnych spowodowanych stosowaniem leków mieszanych, w których obecna była duloksetyna. Najwyższe odnotowane stężenie duloksetyny we krwi udowej w tej serii wynosiło 1,42 mg/l (3). Anderson i wsp. dokonali przeglądu pośmiertnych poziomów duloksetyny w 12 przypadkach śmiertelnych, w których stężenia we krwi obwodowej wahały się od 0,0 do 0,26 mg/l (6). Podobnie Vey i Kovelman poinformowali o sześciu zgonach, w których wykryto duloksetynę, przy czym najwyższe pośmiertne centralne stężenie we krwi wynosiło 2,5 mg/l (4). Podczas gdy te pojedyncze doniesienia opisują stężenia we krwi, nie ma znanych danych dotyczących stężenia duloksetyny w tkankach i płynach ustrojowych w warunkach przedawkowania/toksyczności. Dlatego zgłaszamy przypadek śmiertelnego działania mieszanego leku, w którym stężenie duloksetyny mierzono we krwi udowej, płynie szklistym, tkance wątroby, moczu i treści żołądkowej.
Raport przypadku
70-letnia kobieta rasy kaukaskiej z historią medyczną istotną dla zastawkowej choroby serca z odległą wymianą zastawki, nadciśnieniem tętniczym, przewlekłym bólem pleców z wielokrotnymi operacjami i wcześniejszym przedawkowaniem leków oraz odległym nadużywaniem alkoholu została znaleziona leżąca na podłodze w swojej rezydencji, kiedy sąsiad przeprowadził kontrolę stanu samopoczucia. Była przytomna, ale zdezorientowana i skarżyła się na suchość w ustach, a także wyraziła opinię, że leżała na podłodze od wcześniejszego ranka. Znaleziono przy niej pustą butelkę po wódce, a ona sama była nietrzymająca moczu. Została przewieziona do pobliskiego szpitala, gdzie stwierdzono, że jest bezobjawowa (37,2°C), normotensyjna (130/101 mmHg), tachykardyczna (104 uderzenia na minutę) i tachypatyczna (22 oddechy na minutę). Wstępne badania laboratoryjne wykazały podwyższoną liczbę białych krwinek, łagodnie podwyższony poziom azotu mocznikowego (BUN) i kreatyniny we krwi oraz kwasicę metaboliczną z przerwą anionową. Badanie RTG klatki piersiowej wykazało podejrzenie zapalenia prawego płuca, a tomografia komputerowa głowy nie wykazała urazu. Krótko po powrocie z badań radiologicznych nastąpiło zatrzymanie krążenia i krążenia płucnego i nie udało się jej skutecznie reanimować.
Badanie autopsyjne zostało wykonane następnego dnia i wykazało otyłą kobietę ważącą 168 funtów i mającą 61 cali wzrostu (BMI = 31,7 kg/m2) z dowodami wcześniejszej bioprotetycznej wymiany zastawki aortalnej, która nie wykazywała żadnych grubych ani mikroskopowych wegetacji. Z pośmiertnych posiewów krwi nie wyizolowano żadnych mikroorganizmów. Stwierdzono łagodną miażdżycę układową i nadciśnienie tętnicze oraz powiększone i rozstrzępione serce (450 g). Treść żołądkowa składała się z 40 cm3 gęstego, brunatno-żółtego płynu, bez ciał obcych i wyczuwalnych tabletek. Nie stwierdzono żadnych obrażeń z wyjątkiem złamań żeber przednich związanych z resuscytacją krążeniowo-oddechową. Nie zaobserwowano zapalenia płuc ani brutto, ani mikroskopowo.
Próbka krwi udowej o objętości 50 mL została pobrana podczas pobierania ciała w biurze lekarza sądowego (∼3 h po śmierci) poprzez pobranie przezskórne. Dodatkowe próbki toksykologiczne pobrane podczas badania autopsyjnego (∼20 h po śmierci) były następujące: płyny z ciała szklistego, treść żołądka, tkanka wątroby i mocz. Nie pobierano krwi centralnej. Leki/pojemniki zebrane przez personel medyczny na miejscu zdarzenia są wymienione w Tabeli I.
Leki zebrane przez personel ratownictwa medycznego
Leki . | Dozowanie . | Stawka . | Dni od wydania . | Całkowita liczba wydanych . | Pozostała ilość . | |
---|---|---|---|---|---|---|
Buspirone HCl | 10 mg tab | 1 TID | 70 | 270 | 16 | |
Cyklobenzapryna | 10 mg tab | 1 TID, prn | 10 | 30 | 18 | |
Duloksetyna | 60 mg kaps | 1 QD | 33 | 90 | 0 | |
Furosemid | 20 mg tab | 1 QD | 4 | 30 | 38 | |
Gabapentyna | 400 mg kaps | 1 QD | 69 | 360 | 17 | |
Hydroksyzyna | 25 mg kaps | 1 TID, prn | 118 | 90 | 2 | |
K-….chloru | 8 meq tab | 1 QD | 38 | 85 | 61 | |
Lewotyroksyna | 100 mcg tab | 1 QD | 4 | 30 | . | 29 |
Metoprolol | 100 mg tab | 1 QD | 83 | 90 | 25 |
Leki . | Dozowanie . | Stawka . | Dni od wydania . | Całkowita liczba wydanych . | Pozostała ilość . | |
---|---|---|---|---|---|---|
Buspirone HCl | 10 mg tab | 1 TID | 70 | 270 | 16 | |
Cyklobenzapryna | 10 mg tab | 1 TID, prn | 10 | 30 | 18 | |
Duloksetyna | 60 mg kaps | 1 QD | 33 | 90 | 0 | |
Furosemid | 20 mg tab | 1 QD | 4 | 30 | 38 | |
Gabapentyna | 400 mg kaps | 1 QD | 69 | 360 | 17 | |
Hydroksyzyna | 25 mg kaps | 1 TID, prn | 118 | 90 | 2 | |
K-chlorek | 8 meq tab | 1 QD | 38 | 85 | 61 | |
Lewotyroksyna | 100 mcg tab | 1 QD | 4 | 30 | . | 29 |
Metoprolol | 100 mg tab | 1 QD | 83 | 90 | 25 |
Leki zebrane przez personel ratownictwa medycznego
Leki . | Dozowanie . | Stawka . | Dni od wydania . | Całkowita liczba wydanych . | Pozostała ilość . | |
---|---|---|---|---|---|---|
Buspirone HCl | 10 mg tab | 1 TID | 70 | 270 | 16 | |
Cyklobenzapryna | 10 mg tab | 1 TID, prn | 10 | 30 | 18 | |
Duloksetyna | 60 mg kaps | 1 QD | 33 | 90 | 0 | |
Furosemid | 20 mg tab | 1 QD | 4 | 30 | 38 | |
Gabapentyna | 400 mg kaps | 1 QD | 69 | 360 | 17 | |
Hydroksyzyna | 25 mg kaps | 1 TID, prn | 118 | 90 | 2 | |
K-chloru | 8 meq tab | 1 QD | 38 | 85 | 61 | |
Lewotyroksyna | 100 mcg tab | 1 QD | 4 | 30 | . | 29 |
Metoprolol | 100 mg tab | 1 QD | 83 | 90 | 25 |
Leki . | Dozowanie . | Stawka . | Dni od wydania . | Całkowita liczba wydanych . | Pozostała ilość . | |
---|---|---|---|---|---|---|
Buspirone HCl | 10 mg tab | 1 TID | 70 | 270 | 16 | |
Cyklobenzapryna | 10 mg tab | 1 TID, prn | 10 | 30 | 18 | |
Duloksetyna | 60 mg kaps | 1 QD | 33 | 90 | 0 | |
Furosemid | 20 mg tab | 1 QD | 4 | 30 | 38 | |
Gabapentyna | 400 mg kaps | 1 QD | 69 | 360 | 17 | |
Hydroksyzyna | 25 mg kaps | 1 TID, prn | 118 | 90 | 2 | |
K-chlorek | 8 meq tab | 1 QD | 38 | 85 | 61 | |
Lewotyroksyna | 100 mcg tab | 1 QD | 4 | 30 | . | 29 |
Metoprolol | 100 mcg tab | 1 QD | 83 | 90 | 25 |
Doświadczalne
Post-.mortem specimen collection
Krew pępowinową pobierano ∼3 h po śmierci, jak opisano powyżej. Szklistka, mocz, wątroba i treść żołądkowa zostały pobrane w czasie autopsji ∼20 h po śmierci. Wszystkie próbki przechowywano w lodówce do czasu analizy.
Analiza toksykologiczna
W pośmiertnej krwi udowej wykonano badania przesiewowe na obecność alkoholu i związków lotnych (GC-FID headspace), tlenku węgla (UV-Vis), glikolu etylenowego (GC-MS), powszechnych narkotyków nadużywanych metodą ELISA (amfetamina, barbiturany, benzodiazepiny, kannabinoidy, kokaina/metabolit, fentanyl, metamfetamina, metadon, opiaty, oksykodon/oksymorfon i fencyklidyna) (Immunalysis Inc., Pomona, CA), standardowy kwasowy/neutralny test przesiewowy na narkotyki po ekstrakcji ciecz-ciecz podobnej do tej opublikowanej przez Lo et al. (7) i standardowy zasadowy test przesiewowy na narkotyki metodą GC-MS po ekstrakcji ciecz-ciecz podobnej do tej opublikowanej przez Foerster i Mason (8). Wyniki pozytywne zostały potwierdzone i określone ilościowo za pomocą kolejnych i specyficznych technik.
Materiały
Rozpuszczalniki; metanol otrzymano z EMD Chemicals (Niemcy), klasa OmniSolv została zakupiona przez VWR International (Randor, PA), a JT Baker przez Fisher Scientific (Hampton, NH), acetonitryl (20%) w wodzie z EMD (Niemcy) otrzymano z Fisher Scientific (Hampton, NH), chlorek n-butylu otrzymano z EMD Chemicals (Niemcy), klasa OmniSolv została zakupiona przez VWR International (Randor, PA), 80:20 woda-acetonitryl, 5 mM wodorowęglan amonu (Fluka) i 0.2% kwas octowy w acetonitrylu (Sigma) zostały zakupione od Sigma (St. Louis, MO). Stężony wodorotlenek amonu (NH4OH), stężony kwas solny (HCl) i 0,5 M kwas siarkowy (H2SO4) zostały zakupione od JT Baker przez Fisher Scientific (Hampton, NH), a (1% v/v) metanolowy HCL został przygotowany we własnym zakresie.
Kalibratory/kontrola pozytywna: difenhydramina została uzyskana od Cerilliant (Round Rock, TX). Kontrolę drugiego źródła difenhydraminy uzyskano od Lipomed (Cambridge, MA), przygotowaną w metanolu. Standard wewnętrzny: difenhydramina-d3 otrzymany od Cerilliant (Round Rock, TX), przygotowany w metanolu. Pozytywne kalibratory/kontrole: cyklobenzapryna uzyskana od Cerilliant (Round Rock, TX). Kontrola drugiego źródła otrzymana od Lipomed (Cambridge, MA), przygotowana w metanolu. Standard wewnętrzny: cyklobenzapryna-d3 uzyskana od Toronto Research (North York, ON, Kanada) w metanolu.
Metody
Alkaliczny przesiew leków
Używając mepiwakainy jako standardu wewnętrznego i zmodyfikowanej ekstrakcji ciecz-ciecz podobnej do tej opublikowanej przez Foerstera i Masona (8), próbka przypadku i odpowiednie kontrole zostały przeanalizowane przy użyciu GC-MS w trybie pełnego skanowania. Difenhydramina, cyklobenzapryna i duloksetyna zostały zidentyfikowane na podstawie względnego czasu retencji i widm masowych pełnego skanowania.
Presumptive identification of analytes by MS full scan mode includes a retention time (RRT) match compared with a reference standard and a library match containing at least the three most abundant ions in appropriate proportions.
Difenhydramina i cyklobenzapryna zostały określone ilościowo we własnym zakresie. Krew udowa, szklista, wątroba, mocz i żołądek zostały wysłane do NMS Laboratories w celu ilościowego oznaczenia duloksetyny.
Analiza ilościowa difenhydraminy (GC-MS SIM)
Dyfenhydramina została oznaczona przy użyciu deuterowanego wzorca wewnętrznego i zmodyfikowanej procedury ekstrakcji Foerster (8). Kalibratory firmy Cerilliant (Round Rock, TX) i kontrole firmy Lipomed (Cambridge, MA) przygotowano w metanolu ze wzorców o stężeniu 1,0 mg/mL. Diphenhydramine-d3 zakupiono od firmy Cerilliant (Round Rock, TX). Analizę przeprowadzono za pomocą chromatografu gazowego Agilent Technologies 7890A i obojętnego MSD XL Agilent Technologies 5975C. Kolumnę analityczną stanowiła HP-1 MS (15 m, średnica 0,25 mm i grubość 0,25 µm) z helem jako gazem nośnym (0,9 mL/min). Piec został zaprogramowany na temperaturę początkową 100°C przez 1 min, z szybkością 20°C/min do 320°C. Jony monitorowane dla difenhydraminy wynosiły 58,1 m/z (jon kwantytatywny) i 73,0 m/z; dla difenhydraminy-d3 61 m/z (jon kwantytatywny) i 76 m/z. Sześciopunktową kalibrację przygotowano z wzorców podstawowych w zakresie od 20 do 750 ng/mL z kontrolą 400 ng/mL.
Analiza ilościowa cyklobenzapryny (dynamiczne monitorowanie reakcji wielokrotnych LC-MS-MS, DMRM)
Cykklobenzaprynę mierzono przy użyciu deuterowanego wzorca wewnętrznego i zmodyfikowanej procedury ekstrakcji Foerstera (8). Kalibratory z Cerilliant (Round Rock, TX) i kontrole z Lipomed (Cambridge, MA) zostały przygotowane w metanolu ze standardów o stężeniu 1,0 mg/mL. Cyklobenzapryna-d3 została zakupiona od Toronto Research (North York, ON, Kanada). Analizę przeprowadzono metodą LC-tandemowej spektrometrii mas (MS-MS) z zastosowaniem spektrometru mas Agilent 6410 LC triple quadrupole (Santa Clara, CA) pracującego w trybie jonizacji elektrospray (ESI) w trybie pozytywnym oraz systemu Agilent 1290 Infinity HPLC. Chromatografię przeprowadzono przy użyciu kolumny Waters X-Bridge BEH Phenyl (2,1 × 50 mm × 2,5 µm) z elucją gradientową. Fazy ruchome składały się z 5 mM wodorowęglanu amonu (pH 10) w wodzie DI (faza ruchoma A) oraz 0,2% kwasu octowego w acetonitrylu klasy LC-MS (faza ruchoma B). Szybkość przepływu wynosiła 0,6 mL/min. Gradient fazy ruchomej wynosił 0,0-9,0 min, faza ruchoma B wzrastała od 25 do 50%; 9,0-9,1 faza ruchoma B wzrastała do 75% i utrzymywała się w izokratycznej pozycji do 10,5 min, po czym następował 2-minutowy okres wyrównania po iniekcji. Objętość nastrzyku wynosiła 4 µL, a temperaturę kolumny utrzymywano na poziomie 55°C. Spektrometr mas w trybie ESI pracował z gazem azotowym w następujących warunkach: temperatura, 350°C; natężenie przepływu gazu, 8 L/min; ciśnienie gazu w nebulizatorze, 45 psi; napięcie interfejsu kapilarnego, 1500 V; delta EMV +20; polaryzacja dodatnia. Jony monitorowane dla cyklobenzapryny to 276.2 m/z > 84.1 m/z (jon kwantytatywny), 276.2 m/z > 58.2 m/z i 276.2 m/z > 231.1; dla cyklobenzapryny-d3 279.2 m/z > 87.1 m/z (jon kwantytatywny) i 279.2 m/z > 61.2 m/z. Sześciopunktową kalibrację przygotowano ze standardów podstawowych w zakresie od 20 do 1500 ng/mL z trzema poziomami kontrolnymi.
Analiza ilościowa duloksetyny (LC-MS-MS) w laboratoriach NMS
Duloksetyna była mierzona przy użyciu deuterowanego standardu wewnętrznego z wytrącaniem białka za pomocą roztworu siarczanu cynku. Kalibratory i roztwory kontrolne przygotowano w metanolu ze standardów o stężeniu 1,0 mg/mL zakupionych od firmy Cerilliant (Round Rock, TX). Duloksetynę-d4 otrzymano od firmy Eli Lilly & Co. (Indianapolis, IN). Analizę przeprowadzono za pomocą spektrometru masowego Waters TQD Tandem Mass Spectrometer (Milford, MA) z systemem Waters Acquity Ultra Performance LC. Użyto kolumny Phenomenex Synergi Hydro-RP (2,0 × 50 mm, 2,5 µm) (Torrance, CA), z wkładem Thermo Aquasil C18, 2,1 × 10 mm, 5,0 µm do ochrony przed kolumnami (Bellefonte, PA). Jony monitorowane dla duloksetyny-d4 to 302,1 m/z > 46,9 m/z (jon kwantytatywny) i 302,1 m/z > 158 m/z; oraz dla duloksetyny 298 m/z > 43,8 m/z (jon kwantytatywny) i 298 m/z > 154 m/z. Sześciopunktową kalibrację przygotowano z podstawowego roztworu wzorcowego w zakresie od 3,0 do 300 ng/mL. Oznaczanie duloksetyny w moczu, homogenacie tkanki wątrobowej, płynie z treścią żołądka i płynie z ciała szklistego przeprowadzono stosując dwa poziomy dodawania wzorca dla każdej próbki.
Wyniki
Zasadowy przesiew leków ujawnił obecność difenhydraminy, cyklobenzapryny i duloksetyny. Tabela II zawiera wyniki ilościowe.
Dane toksykologiczne
Lek . | Krew płodowa (mg/L) . | Płyn żołądkowy (mg/L) . | Płyn żylny (mg/L) . | Tkanka wątroby (mg/g) . | Mocz (mg/L) . |
---|---|---|---|---|---|
Cyklobenzapryna | 0,039 | ||||
Difenhydramina | 0.049 | ||||
Duloksetyna | 6.1 | 95 | 0,59 | 360 | 43 |
Lek . | Krew płodowa (mg/L) . | Płyn żołądkowy (mg/L) . | Płyn żylny (mg/L) . | Tkanka wątroby (mg/g) . | Mocz (mg/L) . |
---|---|---|---|---|---|
Cyklobenzapryna | 0,039 | ||||
Difenhydramina | 0.049 | ||||
Duloksetyna | 6.1 | 95 | 0,59 | 360 | 43 |
Dane toksykologiczne
Lek . | Krew płodowa (mg/L) . | Płyn żołądkowy (mg/L) . | Płyn żylny (mg/L) . | Tkanka wątroby (mg/g) . | Mocz (mg/L) . |
---|---|---|---|---|---|
Cyklobenzapryna | 0,039 | ||||
Difenhydramina | 0.049 | ||||
Duloksetyna | 6.1 | 95 | 0,59 | 360 | 43 |
Lek . | Krew płodowa (mg/L) . | Płyn żołądkowy (mg/L) . | Płyn żylny (mg/L) . | Tkanka wątroby (mg/g) . | Mocz (mg/L) . |
---|---|---|---|---|---|
Cyklobenzapryna | 0,039 | ||||
Difenhydramina | 0.049 | ||||
Duloksetyna | 6.1 | 95 | 0,59 | 360 | 43 |
Dyskusja
Przyczyną zgonu w tym przypadku określono jako mieszaną toksyczność polekową duloksetyny, cyklobenzapryny i difenhydraminy. Najbardziej znaczącą składową toksyczności była duloksetyna. Co ciekawe, początkowa skarga zmarłego na „suchość w ustach”, choć niespecyficzna, została opisana jako efekt uboczny terapii duloksetyną (9), prawdopodobnie poprzez jej działanie noradrenergiczne.
Duloksetyna jest stosunkowo nowym lekiem, a w literaturze istnieją ograniczone doniesienia na temat przedawkowania i przypadków śmiertelnych z nią związanych. W przeglądzie z 2010 r. Vey i Kovelman przedstawili dane pośmiertne dotyczące sześciu przypadków śmiertelnych związanych z duloksetyną, samą lub w połączeniu z innymi lekami (4). Poziomy zgłoszone w tych przypadkach zostały uzyskane z krwi centralnej, przy czym najwyższe stężenie duloksetyny (2,5 mg/l) było mniejsze niż połowa stężenia stwierdzonego we krwi obwodowej w omawianym przypadku (6,1 mg/l). Praca Vey’a odnosi się również do kwestii redystrybucji pośmiertnej i przytacza stosunek stężenia duloksetyny we krwi centralnej do krwi udowej wynoszący 1,98, uzyskany przez Andersona i wsp. (6). Biorąc to pod uwagę, możliwe jest, że stężenie stwierdzone w naszym przypadku jest prawie sześciokrotnie większe niż najwyższy zgłoszony poziom. Niestety, w obecnym przypadku nie pobrano do badań centralnej próbki krwi.
W obecnym przypadku przeanalizowano również szereg innych płynów i próbek tkanek. Chociaż próbki, które były badane (tkanka wątroby, treść żołądka, mocz i szklistka) były podobne do tych badanych w pracy Andersona i wsp. z 2006 r. (6), nasz raport ilustruje stężenia w różnych tkankach w warunkach przedawkowania/toksyczności. W przeciwieństwie do tego, Anderson opisał 12 przypadków, w których duloksetyna została zidentyfikowana w próbkach pośmiertnych i nie została „wskazana jako jedyna przyczyna zgonu”. Podobne wnioski zostały przedstawione przez Pilgrim i wsp. w 2014 roku w przeglądzie częstości występowania duloksetyny w medyczno-prawnych dochodzeniach w sprawie śmierci (3). Donoszą oni o stężeniu duloksetyny w 34 zgonach z pośmiertnej krwi udowej w zakresie od 0,01 do 1,42 mg/L, przy średniej 0,14 mg/L. Dziewiętnaście z tych zgonów przypisano toksyczności leku, ale nie konkretnie duloksetynie. W opisie przypadku śmiertelnego związanego z duloksetyną stwierdzono stężenie w moczu wynoszące 670 µg/L (0,67 mg/L) w połączeniu z pośmiertnym stężeniem we krwi udowej wynoszącym 910 µg/L (0,91 mg/L) (10). Dzięki tym i naszemu obecnemu doniesieniu, zakres terapeutycznych i toksycznych poziomów duloksetyny staje się coraz bardziej określony.
Wniosek
Przedstawiono tutaj pośmiertne studium przypadku z najwyższymi stężeniami duloksetyny zgłoszonymi do tej pory, w różnych próbkach źródłowych. Wyniki te dobrze korelują z dużą objętością dystrybucji, o której wiadomo, że wykazuje ją duloksetyna. Pomimo uzyskania poziomów duloksetyny z licznych źródeł, złożony profil farmakologiczno-toksykologiczny duloksetyny pozostaje nie w pełni poznany. Wraz z pojawieniem się tego i innych przypadków pośmiertnych, jest prawdopodobne, że duloksetyna będzie bardziej znaczącym czynnikiem do rozważenia przy ustalaniu przyczyny zgonu. Dlatego ważne będzie, aby toksykolog i patolog sądowy lepiej rozumieli zakres poziomów duloksetyny we krwi i innych próbkach toksykologicznych.
Podziękowania
Autorzy dziękują następującym osobom za pomoc techniczną w analizie tych próbek: Amanda Cooke, Thanh Huynh, Anthony Rodriguez, Justin Spatafore, Jennifer Turri i Jackie Venarchick.
,
,
,
(
)
.
,
,
–
.
(
)
.
,
,
(
)
.
,
,
–
.
,
(
)
.
,
,
–
.
,
,
,
,
(
)
.
,
,
–
.
,
,
,
,
,
et al. . (
)
.
,
,
–
.
,
,
,
,
(
)
.
,
,
–
.
,
(
)
.
,
,
–
.
, wydanie 10.
:
,
, s.
.
,
(
)
.
,
,
–
.
.