Abstract
Questo studio indaga il meccanismo alla base dell’effetto di miglioramento dello zinco sulla fertilità nei ratti obesi utilizzando la proteomica. Sono stati studiati gli effetti di tre diverse dosi di ZnSO4 sulla spermatogenesi e sui livelli ormonali. Spermatogenesi testicolare è stato osservato da colorazione HE. I livelli sierici di estrogeni e testosterone sono stati misurati mediante immunodosaggio a microparticelle chemiluminescenti. L’analisi proteomica dello sperma è stata eseguita mediante cromatografia liquida-spettrometria di massa. Il database DAVID è stato utilizzato per eseguire l’analisi di arricchimento GO e l’analisi dei percorsi KEGG dei geni differenzialmente espressi, e il database online STRING è stato utilizzato per costruire una rete PPI. Il numero di spermatozoi, la motilità degli spermatozoi e gli ormoni del testosterone del gruppo di ratti trattati con ZnSO4 sono aumentati. ZnSO4 ha migliorato la struttura testicolare e le anomalie della spermatogenesi causate dall’obesità. L’analisi proteomica ha mostrato che c’erano 401 proteine differenzialmente espresse in un totale di 6 campioni di sperma del gruppo trattato con ZnSO4 e dei gruppi di obesità. Le proteine differenziate sono state inserite nel sito DAVID. Le 341 proteine identificate sono state poi classificate secondo le loro funzioni biologiche. L’analisi KEGG ha mostrato che le vie di segnalazione arricchite includevano glicolisi/gluconeogenesi, metabolismo del carbonio, ciclo del citrato, metabolismo degli acidi grassi e metabolismo del piruvato. Alcune proteine hanno mostrato di essere associate alle vie di degradazione di valina, leucina e isoleucina. L’analisi STRING ha ottenuto 36 proteine di nodo. L’analisi Cytoscape ha mostrato che queste proteine hanno partecipato principalmente a nove reti tra cui il processo metabolico, l’ossido-riduzione, la respirazione aerobica, lo splicing dell’RNA e la coniugazione del glutatione. ZnSO4 può migliorare la fertilità dei ratti maschi obesi regolando l’espressione delle proteine relative al metabolismo, infiammazione e maturazione dello sperma.
1. Introduzione
L’obesità è associata all’infertilità maschile. C’è una certa coerenza temporale tra l’aumento del tasso di infertilità maschile, la diminuzione della qualità dello sperma e l’aumento del tasso di obesità. L’obesità porta a cambiamenti patologici nell’ultrastruttura testicolare, e l’apoptosi delle cellule spermatogenetiche è significativamente aumentata. La diminuzione del numero di spermatozoi maturi può essere una delle ragioni che portano alla bassa capacità spermatogenica delle persone obese.
Ci sono disturbi del metabolismo degli oligoelementi nelle persone obese. Il livello disturbato del metabolismo degli oligoelementi nel corpo indurrà effetti corrispondenti sul metabolismo dei lipidi. Nel sistema riproduttivo maschile, gli ioni di zinco sono distribuiti principalmente nel testicolo, nell’epididimo, nella prostata e nello sperma. Lo zinco è un marcatore della funzione della prostata. Inoltre, regola la funzione dello sperma, agisce come cofattore per la maggior parte delle reazioni enzimatiche e aiuta a mantenere la motilità dello sperma. Lo zinco svolge anche un ruolo importante nello sviluppo testicolare e nella formazione degli spermatozoi. La carenza di zinco aumenta significativamente l’apoptosi delle cellule germinali nel testicolo del topo e provoca l’arresto della spermatogenesi e danni alla fecondazione. Gli studi hanno dimostrato che gli uomini obesi hanno 3,5 volte più probabilità di avere oligozoospermia rispetto agli uomini con peso normale. L’integrazione di zinco può ridurre il peso delle persone obese. Lo stato di glucosio nel sangue (glicemia a digiuno), i parametri lipidici nel sangue (colesterolo totale, livello di trigliceridi, colesterolo lipoproteico ad alta densità e colesterolo lipoproteico a bassa densità) e la pressione sanguigna sono migliorati dopo l’integrazione di zinco. La preparazione orale di zinco può migliorare il contenuto di zinco nel plasma seminale, promuovere la trasformazione della proteina nucleare dello sperma (cioè, da lisina ad arginina), e inibire la depolimerizzazione prematura del nucleo dello sperma. Può migliorare la motilità dello sperma e la qualità del seme dei pazienti infertili senza effetti collaterali evidenti. Tuttavia, l’applicazione della proteomica nella comprensione degli effetti del trattamento ZnSO4 sulle proteine dello sperma nell’obesità è ancora limitata e ulteriori esplorazioni sono necessarie.
In questo studio, gli effetti di tre diverse dosi di ZnSO4 sulla spermatogenesi e livelli ormonali di ratti obesi sono stati studiati. Il meccanismo alla base di questo effetto è stato ulteriormente analizzato dall’analisi proteomica.
2. Materiali e metodi
2.1. Animali
I ratti Sprague Dawley di 7 settimane (peso 180-200 g) sono stati acquistati dal Centro di animali sperimentali della Hebei Medical University. Sono stati mantenuti in un ciclo luce/buio di 12 ore in una stanza con aria controllata (temperatura, umidità, ) con libero accesso all’acqua e al cibo per animali. Tutte le procedure di sperimentazione animale sono stati approvati dal Comitato Etico dell’Istituto Hebei di pianificazione familiare Scienza e Tecnologia.
2.2. Creazione del modello di obesità, raggruppamento degli animali e campionamento
I ratti sono stati divisi a caso in due gruppi: gruppo di alimentazione normale (15 animali per gruppo) e gruppo di modello di obesità (30 animali per gruppo). Ogni gruppo è stato alimentato con le diete corrispondenti per 8 settimane, cioè una dieta normale per il gruppo normale e una dieta ad alto contenuto di grassi per il gruppo modello di obesità. I pesi corporei dei ratti sono stati pesati settimanalmente e registrati per 8 settimane. Il modello di obesità è stato considerato riuscito quando il peso corporeo medio del gruppo modello era 1,2 volte quello del gruppo di controllo. La lunghezza dei ratti è stata misurata (dalla punta del naso all’ano), e l’indice Lee è stato calcolato dalla formula.
Dopo l’istituzione del modello di obesità, i ratti modello sono stati divisi a caso in due gruppi: il gruppo obesità e il gruppo trattato con ZnSO4. I ratti del gruppo trattato con ZnSO4 hanno ricevuto ZnSO4 (Tianjin Yongda Chemical Reagent Company Limited) (3,2 mg/kg/d) per 4 settimane per via orale. Alla fine dell’esperimento, sono stati misurati il peso corporeo, il peso testicolare, il peso epididimale e il grasso peritesticolare di ogni gruppo, e il sangue è stato prelevato dall’aorta addominale. I campioni di sperma sono stati raccolti dall’epididimo caudale. I testicoli sono stati rimossi.
2.3. Conteggio degli spermatozoi e motilità degli spermatozoi
L’epididimo sinistro di ogni ratto è stato raccolto immediatamente dopo il sacrificio ed è stato trasferito in una provetta contenente 1 mL di soluzione salina calda (37°C). Sono stati poi agitati a 37°C per 5 minuti per permettere la dispersione degli spermatozoi. Circa 10 μL di sospensione spermatica diluita sono stati trasferiti in ogni camera di conteggio dell’emocitometro per determinare la concentrazione e la motilità dello sperma. La motilità è stata misurata come la percentuale di spermatozoi mobili (grado a+b) sul totale degli spermatozoi.
2.4. Determinazione del glucosio nel siero a digiuno, dei lipidi nel sangue e dell’insulina
I livelli di colesterolo totale, trigliceridi, lipoproteine a bassa densità e lipoproteine ad alta densità nel siero sono stati misurati su un analizzatore Siemens Centaur XP con un kit di immunodosaggio a microparticelle chemiluminescenti (Medical System Biotechnology Co., LTD). Il glucosio nel siero a digiuno è stato misurato con un kit di rilevamento del glucosio (Medical System Biotechnology Co., Ltd., Ningbo, Cina) su un analizzatore ACCUTE TBA-40FR (Toshiba Medical Systems Co., Tokyo, Giappone). I livelli sierici di insulina sono stati determinati mediante test immunologico a chemiluminescenza su un sistema UniCel DxI 800 (Beckman Coulter, CA, USA) con reagenti corrispondenti (Beckman Coulter, CA, USA).
2.5. Enzyme-Linked Immunosorbent Assay (ELISA)
Il livello di leptina è stato determinato da kit ELISA (Multisciences Biotech Co., Ltd., Hangzhou, Cina). Dopo la fine della reazione, l’assorbanza è stata letta a 450 nm.
2.6. Colorazione HE
I testicoli sono stati fissati in soluzione di Bouin per una notte. I testicoli sono stati poi disidratati con alcool e inseriti in paraffina. I campioni sono stati sezionati a 5 μm di spessore e colorati con colorazione HE. La spermatogenesi testicolare è stata osservata al microscopio ottico.
2.7. Misurazione degli ormoni androgeni
I livelli di estrogeno e testosterone nel siero sono stati misurati su un analizzatore Siemens Centaur XP mediante un test immunologico con microparticelle chemiluminescenti. Il kit di rilevamento è stato acquistato da Siemens Healthcare Diagnostic Inc. e Cayman Chemical, Michigan, USA.
2.8. Cromatografia liquida-spettrometria di massa
I campioni di proteine dello sperma utilizzati in questo studio provenivano dai tre gruppi (gruppo normale, gruppo modello obesità e gruppo trattato con ZnSO4). I campioni di sperma sono stati raccolti dall’epididimo caudale. Brevemente, le proteine sono state estratte con un tampone lisato con 8 M urea, 10 mM DTT, e inibitore della proteasi. La sonicazione è stata eseguita per 3-5 minuti. Il surnatante è stato raccolto dopo una centrifugazione a 20000 g per 10 minuti a 4°C, e le proteine sono state quantificate con il metodo Bradford. Le proteine estratte sono state incubate con 100 mM TEAB a 100 μL e poi con 200 mM TCEP a 55°C per 1 h. Dopo di che, sono stati aggiunti 5 μL di 375 mM iodoacetamide (IAA). Dopo l’incubazione al buio per 30 min, è stato aggiunto acetone preraffreddato ed è stato incubato una notte a -20°C. Il surnatante è stato rimosso accuratamente dopo una centrifugazione a 8000 g a 10°C per 10 min, e il lisato è stato lasciato a temperatura ambiente per 2-3 min per asciugare. Infine, 100 μg di proteina, 100 μL di soluzione TEAB 100 mM, e l’enzima tripsina rapporto proteina (1 : 50) sono stati mescolati insieme e la digestione enzimatica è stata eseguita durante la notte a 37°C.
Cromatografia liquida-spettrometria di massa: campioni parzialmente digeriti sono stati presi e sciolti nella soluzione A (2% ACN/98% H2O/0.1% FA). Dopo la centrifugazione a 20000 g per 30 minuti, il surnatante è stato prelevato e la sequenza proteica è stata rilevata dallo spettrometro di massa EASY-nLC liquid phase-Q Exactive (American Thermo Fisher).
Le condizioni della spettrometria di massa erano 90 min per il tempo di acquisizione dei dati, 2 kV per la tensione di spruzzo, 320°C per la temperatura del capillare, 27% per l’energia di collisione normalizzata, e 300-1400 Da per la gamma di massa di raccolta. I parametri primari erano 70000 per la risoluzione, 36 per il target AGC, 60 ms per il massimo IT e il profilo per il tipo di dati dello spettro. I parametri secondari erano 17500 per la risoluzione, 54 per il target AGC, 80 ms per il massimo IT, e 3.0 m/z per la finestra di isolamento.
2.9. Data Retrieval
Nel motore di ricerca MaxQuant 1.5.2.8, il primo errore è 20 ppm, il secondo errore è 0.02 Da. La modifica fissa è la seguente. La cisteina è modificata in Carbamidomethyl-Cys, e la modifica variabile è la seguente: Ossidazione-M, digestione LysisC o Trypsin, o Glu-C. La digestione enzimatica permette fino a 2 siti mancanti. Il riempimento delle lacune dei dati, la normalizzazione e lo screening delle differenze () sono stati tutti eseguiti utilizzando le impostazioni standard del software Perseus. Un totale di 1344 proteine sono state identificate e quantificate in 6 campioni di entrambi i gruppi. Sono state ottenute informazioni qualitative e quantitative del gruppo Zn e G sulle proteine differenziali. Il software Perseus ha eseguito il test e l’analisi di significatività sui risultati quantitativi e sui rapporti delle proteine. L’elenco delle proteine differenziali ottenuto è il seguente: un totale di 401 proteine differenziali significative sono state ottenute dai risultati del -test e dall’analisi della distribuzione differenziale.
2.10. Analisi GO (Gene Ontology) e KEGG (Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes)
Le proteine differenziali sono state importate nel sito DAVID (Functional Annotation Bioinformatics Microarray Analysis) (https://david.ncifcrf.gov/) per l’estrazione bioinformatica di base. Gli strumenti web forniti da DAVID sono stati utilizzati per cercare i termini di annotazione funzionale e i percorsi che erano arricchiti nelle proteine sopra identificate, tra cui componente cellulare, funzione molecolare e processo biologico.
2.11. Analisi della rete di interazione proteica
Le proteine differenziali selezionate sono state importate nel database online STRING (https://string-db.org/) per l’analisi. La mappa della rete di interazione genica differenziale è stata disegnata. I dati della rete interattiva sono stati esportati nel software Cytoscape 3.2 per determinare la proteina del nodo centrale della rete.
2.12. Analisi statistica
I dati sono stati visualizzati come . L’analisi statistica è stata eseguita in SPSS22.0 utilizzando l’analisi della varianza (ANOVA) a una via con un valore < 0,05 considerato statisticamente significativo.
3. Risultati
3.1. Rispetto al gruppo di controllo, il peso corporeo, il grasso peritesticolare, l’indice di Lee, i colesteroli totali, i trigliceridi, le lipoproteine ad alta densità e la leptina dei ratti del gruppo obesità e la leptina dei ratti del gruppo trattato con ZnSO4 sono aumentati significativamente. Rispetto al gruppo di controllo, la lipoproteina a bassa densità dei ratti del gruppo obesità è diminuita significativamente. Rispetto al gruppo obesità, il peso corporeo, il grasso peritesticolare e l’indice di Lee sono diminuiti nel gruppo trattato con ZnSO4, e la differenza era statisticamente significativa (Tabella 1). Al fine di rilevare gli effetti di ZnSO4 sulla fertilità dei ratti, ogni gruppo di parametri seminali è stato prima valutato secondo i criteri OMS 2010. Il numero di spermatozoi e la motilità degli spermatozoi sono stati inibiti nel gruppo obesità, come mostrato nella tabella 2. Rispetto al gruppo obesità, il numero di spermatozoi e la motilità dello sperma dei ratti trattati con ZnSO4 sono aumentati, suggerendo che ZnSO4 migliora i parametri dello sperma nei ratti obesi. L’obesità stessa può causare un aumento dei lipidi nel sangue, ma i nostri risultati hanno mostrato che la glicemia, i lipidi nel sangue e i livelli di insulina non hanno raggiunto il livello del diabete. Si può considerare che i fattori di confondimento delle complicazioni diabetiche sono stati esclusi. Inoltre, abbiamo rilevato il livello di testosterone nel siero. I risultati hanno mostrato che gli ormoni testosterone sono aumentati nel gruppo trattato con ZnSO4 rispetto al gruppo obesità (Tabella 2). Quindi, il trattamento con ZnSO4 potrebbe migliorare la qualità dello sperma dei ratti obesi.
Normale
Obesità
ZnSO4-trattato
Peso corporeo (g)
#
Peso testicolare (g)
Peso epididimale (g)
grasso peritesticolare (g)
#
Lunghezza del corpo (cm)
L’indice di Lee
#
Colesterolo totale (mmol/L)
#
Trigliceridi (mmol/L)
#
Liquidi ad altalipoproteine ad alta densità (mmol/L)
#
Bassa(mmol/L)
#
Glicemia sierica a digiuno (mmol/L)
Insulina (mU/L)
Leptina (pg/mL)
#
#
Nota: # rispetto al controllo normale; rispetto all’obesità.
Tabella 1
Confronto dei gruppi normali, obesità e ZnSO4-trattato nei dati di base.
Normale
Obesità
ZnSO4-trattato
Concentrazione di sperma (per mL)
#
Motilità dello sperma (a+b%)
#
Testosterone (ng/mL)
Estrogeno (pg/mL)
Nota: rispetto al controllo normale; rispetto all’obesità.
Tabella 2
Parametri dello Semen e livelli di ormone testosterone dei gruppi normali, obesità e trattati con ZnSO4.
3.2. Il trattamento con ZnSO4 migliora il recupero della compromissione testicolare indotta dall’obesità
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Nota: # rispetto al controllo normale; rispetto all’obesità.
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Nota: rispetto al controllo normale; rispetto all’obesità.
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Di conseguenza, abbiamo condotto l’analisi istologica del tessuto testicolare e i risultati sono stati mostrati nella Figura 1. Secondo l’istologia del testicolo, il gruppo normale ha mostrato una spermatogenesi normale (Figure 1(a) e 1(d)), mentre il gruppo dell’obesità ha mostrato una spermatogenesi interrotta poiché il lume del tubulo seminifero era quasi vuoto (Figure 1(b) e 1(e)). Come ci aspettavamo, il gruppo trattato con ZnSO4 ha mostrato un miglioramento significativo rispetto al gruppo obesità nell’istologia del testicolo con la comparsa di cellule di Sertoli e Leydig normali e spermatogenesi non interrotta (Figure 1(c) e 1(f)). Così, ZnSO4 può migliorare la struttura testicolare e le anomalie della spermatogenesi causate dall’obesità.
3.3. Classificazione di 341 proteine dello sperma dalla bioinformatica: Componente cellulare, funzione molecolare e processo biologico
Per determinare le proteine differenzialmente espresse, è stata eseguita l’analisi proteomica. Un totale di 1344 proteine sono state identificate e quantificate in un totale di 6 campioni di sperma del gruppo trattato con ZnSO4 e del gruppo obesità. Il software Perseus ha eseguito il test e l’analisi di significatività differenziale sui risultati quantitativi e sui rapporti delle proteine. Un totale di 401 proteine significative sono state ottenute. Le proteine differenziali sono state inserite nel sito DAVID per il gruppo trattato con ZnSO4 e le differenze del gruppo obesità nella funzione delle proteine. Nella classificazione GO, 371 proteine sono state analizzate, e 30 proteine non corrispondevano. Le 341 proteine identificate sono state poi classificate secondo le loro funzioni biologiche. Abbiamo usato gli strumenti web forniti da DAVID per cercare i termini di annotazione funzionale e i percorsi che erano arricchiti nelle proteine sopra identificate. I risultati di queste analisi sono stati mostrati nella figura 2. Ci siamo concentrati sull’ontologia di componente cellulare, funzione molecolare e processo biologico per l’analisi di arricchimento dei termini di annotazione funzionale con e .
(a)
(b)
(c)
(d)
(a)
(b)
(c)
(d)
Nel gruppo “componente cellulare” (Figura 2(a)), l’analisi delle categorie ha mostrato che il 59% delle proteine con differenze significative erano componenti di organelli, e il 60,7% di quelle erano costituenti di organelli. Inoltre, il 29,6% delle proteine apparteneva a un complesso macromolecolare. L’analisi dei termini GO “funzione molecolare” ha rivelato che il 22% delle proteine sono state classificate come proteine con attività catalitica (Figura 2(b)). Le altre proteine potevano essere classificate come leganti di proteine, leganti di rRNA e leganti di enzimi. Per quanto riguarda il database “processo biologico” (Figura 2(c)), la maggior parte delle proteine del 24% erano associate al processo metabolico. Inoltre, le proteine erano collegate con il trasporto, la trasduzione del segnale, la morte cellulare, l’adesione cellulare, il processo del sistema immunitario e la riproduzione. I risultati dell’analisi del percorso del segnale (Figura 2(d)) con proteine concentrate e arricchimento sono i seguenti. Molteplici vie metaboliche come la glicolisi/gluconeogenesi, il metabolismo del carbonio, il ciclo del citrato (ciclo TCA), il metabolismo degli acidi grassi e il metabolismo del piruvato sono stati disturbati e colpiti, e alcune proteine hanno dimostrato di essere associate alle vie di degradazione della valina, leucina e isoleucina.
3.4. Gli effetti dello zinco sono ulteriormente identificati dalle proteine dello sperma differenzialmente espresse
L’analisi di quantificazione è stata eseguita per confrontare i livelli di proteine tra i tre gruppi. Nelle proteine differenziali, abbiamo selezionato proteine metaboliche, proteine associate al trasporto di zinco e proteine nodo della rete (Tabella 3). Le proteine con cambiamenti statisticamente significativi sono state mostrate nella Figura 3. Queste proteine erano ARG2, COX5B, ZNT1, LYAR e TM165. Rispetto al gruppo obesità, l’espressione di ARG2, COX5B e ZNT1 nel gruppo trattato con ZnSO4 era significativamente diminuita, mentre l’espressione di LYAR e TM165 era significativamente aumentata.
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